Curso de TÉCNICO EN MICROBIOLOGÍA
Tipo: Cursos
Método: A distancia
Precio/facilidades: Consulte / Matrícula gratis
Academia: Formacion Universitaria S.L.
Duración: 600
Formación Universitaria es un centro privado de formación semipresencial y a distancia. Nuestra misión es proporcionar a nuestros alumnos una enseñanza práctica que los capacite para obtener empleo y p ...
 Dirigido a
Dirigido a aquellas personas que deseen incorporarse con garantías en un futuro al mundo laboral, o actualizar sus conocimientos profesionales.
 Requisitos
IDIOMA: CASTELLANO
 Programa
CONTENIDOS

MÓDULO 1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO.
- Documentación sanitaria:
· Documentación clínica.
· Documentación no clínica.
- Organización jerárquica y departamental de un centro sanitario:
· Organigramas de centros sanitarios.
· Organigrama de un laboratorio.
· Funciones del personal de un laboratorio.
- Normas de seguridad en el trabajo referidas a los aparatos y las instalaciones de los laboratorios clínicos para la prevención de riesgos físicos y químicos.
- Gestión de existencias:
· Sistemas de almacenamiento.
· Métodos de valoración de existencias.
· Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios.
- Conservación de equipos:
· Tipos de equipos de un laboratorio clínico.
· Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio.
· Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos.
- Aplicaciones informáticas:
· Conocimientos básicos de informática.
· Tipos y estructura de las bases de datos.
· Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén.
- Estadística básica:
· Medidas de tendencia central.
· Medidas de dispersión.
· Representaciones gráficas de resultados.
- Información científico-técnica:
· Estructura de presentación de la información científica.
· Búsqueda de información en bases de datos sanitarias.

MÓDULO 2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS.
- Muestras biológicas humanas:
· Concepto de espécimen y de muestra.
· Características generales de la sangre:
Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar
Uso de sangre en ayunas
Utilización de suero o plasma
Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error
Anticoagulantes
· Características generales de la orina:
Sustancias y elementos formes analizables en muestras de orina
· Características generales de las heces.
· Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputos y hemocultivos.
- Obtención de las muestras biológicas:
· Obtención de plasma y suero.
· Recogida de orina.
· Recogida de heces.
- Manipulación de las muestras biológicas:
· Sistemas de transporte de las muestras.
· Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras.
· Centrifugación de muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación.
· Conservación de las muestras biológicas.
· Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos.
- Técnicas de preparación de reactivos:
· Conceptos de molaridad, normalidad y molalidad.
· Métodos de cálculo y técnicas de ajuste del pH.
· Cálculos necesarios para la preparación de disoluciones.
- Cálculos en la realización de diluciones.
- Normas de seguridad e higiene en la manipulación de muestras biológicas.

MÓDULO 3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS.
- Fisiología de la respuesta inmune:
· Inmunidad celular.
· Concepto de antígeno y formación de anticuerpos.
· Reacción antígeno-anticuerpo.
· Sistema de complemento.
· Antígenos de histocompatibilidad.
· Mecanismos de la respuesta inmune.
· Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad.
- Técnicas de análisis basadas en la precipitación y aglutinación de complejos antígeno-anticuerpo:
· Precipitación en medio líquido.
· Técnicas de precipitación en gel.
· Técnicas de aglutinación con hematíes y látex.
· Técnicas de inhibición de la aglutinación.
· Fijación del complemento.
- Inmunoensayos:
· Radioinmunoensayos.
· Enzimainmunoensayos.
· Fluoroinmunoensayos.
· Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes.
- Inmunofluorescencia:
· Microscopio de fluorescencia.
· Fluoróforos.
· Inmunofluorescencia directa.
· Inmunofluorescencia indirecta.
- Control de calidad de las técnicas inmunológicas:
· Controles internos y externos.
· Programas de control de calidad.
· Coeficientes de variación.
· Gráficos de control de calidad.

MÓDULO 4. TÉCNICAS DE CULTIVO E IDENTIFICACIÓN EN MICROBIOLOGÍA CLÍNICA.
- Bacterias y hongos:
· Taxonomía de bacterias y hongos.
· Estructuras bacterianas y de hongos.
- Técnicas de limpieza y esterilización:
· Conceptos de limpieza, desinfección y esterilización.
· Tipo de material para la limpieza, desinfección y esterilización.
· Clasificación del material, según la técnica a utilizar.
- Técnicas de observación microscópica de microorganismos:
· Microscopía óptica.
· Visualización in vivo.
· Fijación y tinciones de bacterias y hongos.
- Tipificación bioquímica:
· Actividad biológica y requerimientos de bacterias y hongos.
· Pruebas de identificación bioquímica.
- Medios de cultivo:
· Componentes de los medios de cultivo.
· Clasificación de los medios de cultivo.
· Preparación de los medios de cultivo.
· Medios de cultivo especiales.
· Cultivo de anaerobios. Cámara de anaerobiosis.
· Aislamiento y recuento de bacterias.
- Antibiograma:
· Mecanismos de acción de los antibióticos.
· Técnicas de antibiograma.
· Resistencia bacteriana.
· Técnicas rápidas para el estudio de las resistencias a antibióticos.
- Control de calidad en microbiología:
· Controles internos y externos.
· Programas de control de calidad.
· Coeficientes de variación.
· Gráficos de control de calidad.

MÓDULO 5. TÉCNICAS DE CULTIVO EN VIROLOGÍA.
- Virología general:
· Composición y estructura de los virus.
· Taxonomía vírica.
· Enfermedades causadas por virus.
- Técnicas de purificación de virus:
· Fuentes de obtención de virus.
· Contaminantes en la purificación de virus.
· Procesos en la purificación de virus.
· Técnicas de ultracentrifugación.
- Técnicas de multiplicación de virus en cultivos celulares:
· Requerimientos físicos y nutritivos de los cultivos celulares.
· Factores de crecimiento.
· Destoxificación de cultivos.
· Tipos de cultivos.
· Titulación de virus para el diagnóstico.
- Control de calidad en virología:
· Controles internos y externos.
· Programas de control de calidad.
· Coeficientes de variación.
· Gráficos de control de calidad.
MÓDULO 6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS E IDENTIFICACIÓN DE PARÁSITOS.
- Parasitología:
· Definición de parásito.
· Tipos de parásitos.
· Descripción y patogenia de los principales parásitos patógenos para el hombre.
- Observación macroscópica de parásitos en heces.
- Observación microscópica de parásitos en distintas muestras:
· Examen en fresco.
· Tinción vital.
· Tinciones permanentes.
· Técnicas especiales
- Métodos de concentración de parásitos:
· Sedimentación y centrifugación.
· Flotación.
- Técnicas inmunológicas en la detección de parásitos:
· Problemas en la obtención de anticuerpos para parásitos.
· Hemaglutinación indirecta.
· Doble difusión en gel.
· Fijación del complemento.
· Inmunoelectroforesis.
· Aglutinación en látex.
· Inmunofluorescencia indirecta.
· Enzimainmunoensayo.
- Control de calidad en parasitología:
· Controles internos y externos.
· Programas de control de calidad.
· Coeficientes de variación.
· Gráficos de control de calidad

MODULO 7. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR.
- Estructura y función de los ácidos nucleicos:
· Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas.
· El ácido desoxirribonucleico como material genético.
· Desnaturalización del ADN.
· Replicación, trascripción y traducción de la información genética.
· Principios básicos de la regulación genética.
· Alteraciones en el ADN: mutaciones.
- Objetivos y técnicas de los estudios cromosómicos:
· Cultivos de linfocitos y de fibroblastos.
· Preparación de las muestras.
· Microfotografías e identificación de los cromosomas.
- Técnicas básicas en el diagnóstico molecular:
· Electroforesis de ácidos nucleicos.
· Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas.
· Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western “blotting”, “Dot Blot” e Hibridación “in situ”.
· Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN.
· Tecnología del ADN recombinante.
· ADNc.
· Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
· Análisis de secuencias de ADN.
· Transferencia de ADN a células eucariotas.
- Aplicación de la genética molecular.
· Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias:
Análisis molecular directo e indirecto.
Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular.
· Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer):
Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento.
Genes de la familia ras.
· Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas.
· Aplicación de la genética molecular en medicina legal y forense.
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